FADD

FADD
PDBに登録されている構造
PDBオルソログ検索: RCSB PDBe PDBj
PDBのIDコード一覧

3OQ9, 1A1W, 1A1Z, 1E3Y, 1E41, 2GF5, 3EZQ

識別子
記号FADD, GIG3, MORT1, Fas associated via death domain, IMD90
外部IDOMIM: 602457 MGI: 109324 HomoloGene: 2836 GeneCards: FADD
遺伝子の位置 (ヒト)
11番染色体 (ヒト)
染色体11番染色体 (ヒト)[1]
11番染色体 (ヒト)
FADD遺伝子の位置
FADD遺伝子の位置
バンドデータ無し開始点70,203,296 bp[1]
終点70,207,390 bp[1]
RNA発現パターン
さらなる参照発現データ
遺伝子オントロジー
分子機能 identical protein binding
tumor necrosis factor receptor superfamily binding
death effector domain binding
caspase binding
血漿タンパク結合
protease binding
death receptor binding
tumor necrosis factor receptor binding
receptor serine/threonine kinase binding
protein-containing complex binding
細胞の構成要素 細胞質基質
脂質ラフト
ripoptosome
cell body
neuron projection
CD95 death-inducing signaling complex
細胞膜
細胞死誘導シグナル伝達複合体
細胞質
細胞核
高分子複合体
生物学的プロセス TRAIL-activated apoptotic signaling pathway
regulation of extrinsic apoptotic signaling pathway via death domain receptors
motor neuron apoptotic process
免疫系プロセス
necroptotic signaling pathway
activation of cysteine-type endopeptidase activity involved in apoptotic process
negative regulation of necroptotic process
positive regulation of interleukin-8 production
positive regulation of type I interferon-mediated signaling pathway
細胞表面受容体シグナル伝達経路
TRIF-dependent toll-like receptor signaling pathway
positive regulation of macrophage differentiation
defense response to virus
activation of cysteine-type endopeptidase activity
apoptotic signaling pathway
cellular response to mechanical stimulus
extrinsic apoptotic signaling pathway in absence of ligand
positive regulation of transcription by RNA polymerase II
extrinsic apoptotic signaling pathway via death domain receptors
regulation of apoptotic process
death-inducing signaling complex assembly
positive regulation of extrinsic apoptotic signaling pathway via death domain receptors
positive regulation of tumor necrosis factor production
positive regulation of I-kappaB kinase/NF-kappaB signaling
シグナル伝達
positive regulation of proteolysis
viral process
アポトーシス
positive regulation of activated T cell proliferation
extrinsic apoptotic signaling pathway
positive regulation of T cell mediated cytotoxicity
positive regulation of extrinsic apoptotic signaling pathway
胸腺発生
positive regulation of adaptive immune response
T cell differentiation in thymus
自然免疫
脾臓発生
negative regulation of activation-induced cell death of T cells
negative regulation of extrinsic apoptotic signaling pathway via death domain receptors
positive regulation of interferon-gamma production
positive regulation of CD8-positive, alpha-beta cytotoxic T cell extravasation
リンパ節発生
T cell homeostasis
response to cocaine
response to morphine
behavioral response to cocaine
regulation of necroptotic process
positive regulation of apoptotic process
toll-like receptor 3 signaling pathway
腎臓発生
出典:Amigo / QuickGO
オルソログ
ヒトマウス
Entrez
Ensembl
UniProt
RefSeq
(mRNA)

NM_003824

NM_010175

RefSeq
(タンパク質)

NP_003815

NP_034305

場所
(UCSC)
Chr 11: 70.2 – 70.21 Mbn/a
PubMed検索[2][3]
ウィキデータ
閲覧/編集 ヒト閲覧/編集 マウス

FADD(Fas-associated protein with death domain)は、ヒトでは11番染色体英語版の11q13.3領域のFADD遺伝子によってコードされるタンパク質である[4]MORT1(mediator of receptor-induced toxicity)とも呼ばれる。

FADDはアダプタータンパク質であり、アポトーシスの過程でFas受容体などTNF受容体スーパーファミリー英語版のメンバーとカスパーゼ-8-10英語版前駆体とを橋渡しして細胞死誘導性シグナル伝達複合体英語版(death-inducing signaling complex、DISC)を形成する。最もよく知られたアポトーシスにおける役割に加えて、FADDは細胞増殖、細胞周期の調節、発生など他の過程にも関与していることが知られている。

構造

FADDは23 kDaのタンパク質で、208アミノ酸から構成される。C末端デスドメイン英語版(DD)とN末端デスエフェクタードメイン英語版(DED)という2つの主要なドメインを含む。各ドメインの配列類似性は極めてわずかであるが、構造的には互いに類似しており、いずれも6本のαヘリックスから構成される[5][6]。DDは細胞膜のFasなどの受容体に、DDどうしの相互作用を介して結合する[7]。こうしたDD間相互作用は、αヘリックス2と3が関与する静電的相互作用によって行われる[8]。DEDはカスパーゼ-8前駆体などの細胞内分子のDEDに結合する[9]。この相互作用は疎水的相互作用によって行われていると考えられている[6]

機能

外因性アポトーシス

Fasリガンドによって刺激されると、Fas受容体は三量体化する。Fasを含む多くの受容体が細胞質側にDDを持ち、そのため細胞死受容体英語版と呼ばれている。FADDは自身のDDを介してこの三量体構造のDDに結合し[7]、その結果FADDのDEDが露出する。そして、FADDとカスパーゼ前駆体のDEDどうしの相互作用によってカスパーゼ-8、-10前駆体がリクルートされる[10]。これによって、細胞死誘導性シグナル伝達複合体(DISC)と呼ばれる複合体が形成される[11]。カスパーゼ-8、-10はイニシエーターカスパーゼとして知られている。これらは同種の他のカスパーゼ前駆体と近接した際に、自身のアスパラギン酸残基での自己触媒切断によって活性型タンパク質となる。この活性化されたタンパク質はさらにカスパーゼを切断して活性化し、カスパーゼカスケードを開始する[12]。活性化されたカスパーゼはICAD英語版などの細胞内タンパク質を切断し、最終的には細胞のアポトーシスを引き起こす[13]

TRAIL英語版DR4英語版DR5英語版への結合も同じ機構でアポトーシスを引き起こす[14]

アポトーシスはTNFR1へのリガンドの結合によっても開始される。しかし、その機構は少し複雑である。TRADD英語版と呼ばれる、DDを持つ他のアダプタータンパク質やその他のタンパク質が活性化されたTNF1Rに結合し、complex Iと呼ばれる複合体が形成される。その結果、NF-κB経路が活性化され、細胞生存が促進される。その後、この複合体はインターナリゼーションされ、FADDがDDどうしの相互作用を介してTRADDに結合し、complex IIと呼ばれる複合体が形成される。FADDはカスパーゼ-8前駆体をリクルートし、カスパーゼカスケードが開始されてアポトーシスが引き起こされる[15]

Diagram shows the extrinsic apoptotic pathway whereby the Fas receptor (FasR)on one cell is stimulated by the Fas ligand (FasL)on a different cell, recruiting FADD to the FasR via an interaction between the death domains (DD) of both molecules. Procaspase 8 is recruited to FADD and interacts via the death effector domains (DED) of both molecules. This results in the cleavage and activation of procaspase 8, forming caspase 8, which goes on to cleave and activate other caspases such as procaspase 3 to initiate the caspase cascade which leads to cell death
アポトーシスの外因性経路: Fasリガンド(FasL)によって刺激されたFas受容体(FasR)は、FADDをFasRへ、双方の分子のDDどうしの相互作用を介してリクルートする。カスパーゼ-8前駆体はFADDへリクルートされ、双方の分子のDEDを介して相互作用する。その結果、カスパーゼ-8前駆体は切断され活性化されてカスパーゼ-8となり、カスパーゼ-3前駆体など他のカスパーゼの切断と活性化を行い、細胞死をもたらすカスパーゼカスケードを開始させる。

ネクロトーシス

FADDはネクロトーシス英語版の調節にも関与しており、この過程はセリン/スレオニンキナーゼRIPK1RIPK3英語版を必要とする。活性化されたカスパーゼ-8はこれらのキナーゼを切断し、ネクロトーシスを阻害する。カスパーゼ-8の活性化には、カスパーゼ-8前駆体を互いに近接させてその活性化を促進するFADDが必要であるため、FADDはネクロトーシスの負の調節に必要である。したがって、FADDが欠乏した細胞はカスパーゼ-8前駆体をリクルートして活性化することができないため、ネクロトーシスが誘導される。FADDはRIPK1とRIPK3にも直接的に結合するが、この相互作用の重要性は現段階では不明である[13]

オートファジーによる細胞死

オートファジーはストレス条件下での細胞生存を可能にする過程であるが、細胞死をもたらす場合もある。

FADDはDDを用いて、オートファジーに関与するタンパク質ATG5英語版と相互作用する。この相互作用は、IFN-γによって誘導される、オートファジーによる細胞死に必要不可欠である[16]

対照的に、FADDはオートファジーによる細胞死を阻害し、細胞生存を促進することも示されている。FADDはATG5と結合し、さらにATG12英語版、カスパーゼ-8、RIPK1も含む複合体を形成する。この複合体の形成は、オートファジーシグナルによって刺激される。その後、カスパーゼ-8はRIPK1を切断し、このシグナル伝達を阻害するとで細胞死を阻害する[17]

発生

FADDのノックアウトマウスが胚性致死であることは、FADDの胚発生における役割の存在を示している。致死となるのは、心臓の発生の異常のためであると考えられている[18]。この心臓の発生の異常は、FADDに依存したNF-κB経路の調節の異常のためである可能性がある[19]

また、FADDはゼブラフィッシュの発生にも関与している[20]

細胞周期の調節

FADDはT細胞細胞周期の調節に関与していると考えられている。この調節はFADDのセリン194番のリン酸化に依存しており、リン酸化はCKIα英語版によって行われる。このリン酸化型FADDは主に内に存在し、細胞周期のG2に大幅に増加するのに対し、G1にはごくわずかに検出されるだけである。リン酸化型FADDは紡錘体に位置し、G2/M期の移行を媒介することが提唱されているが、その機構は未解明である[21]

リンパ球の増殖

FADDは、T細胞受容体抗原によって刺激された際のT細胞の増殖に必要不可欠である[22]。対照的に、FADDはB細胞受容体の刺激によるB細胞の増殖には影響しない。しかし、TLR3TLR4の刺激によるB細胞の増殖には必要である[23]

炎症

NF-κBシグナル伝達経路の活性化は、さまざまな炎症性サイトカインや抗アポトーシス遺伝子の転写を引き起こす。NF-κBシグナル伝達は、FADD欠乏細胞ではTNFR1やFas受容体の刺激後に阻害されることが発見されている。このことは、FADDがNF-κB経路を活性化する役割があることを示唆している。逆に、FADDはこの経路を阻害する役割も持つ。通常、TLR4やIL1R1英語版といった受容体の刺激に伴って、アダプタータンパク質MyD88が細胞膜へリクルートされ、そこでDD-DD相互作用を介してIRAK英語版へ結合する。これによってNF-κBの核内移行に至るシグナル伝達経路が活性化され、核内でNF-κBは炎症サイトカインの転写を誘導する。FADDはDDを介してMyD88に結合することでIRAKとの相互作用に干渉し、NF-κBの核内移行と炎症を引き起こすカスケードを妨げる[24][25]

その他

FADDは効率的な抗ウイルス応答に必要である。ウイルス感染に際して、FADDはIFN-αの産生に必要なIRF7英語版のレベルの上昇に必要である。IFN-αはウイルスに対する応答に関与する重要な分子である[26]

FADDはプロテインキナーゼC(PKC)を脱リン酸化して不活性化するホスファターゼの活性化にも関与している。FADDが存在しない場合、PKCは活性化状態のままとなり、細胞骨格の再構成や細胞の運動性などの過程を引き起こすシグナル伝達カスケードが継続される[27]

FADDはグルコースレベルの調節にも関与している可能性が示されており、この機能にはリン酸化型のFADDが重要である[28]

調節

Regulation of FADD by MKRN1: MKRN1 ubiquitinylates FADD targeting it for degradation by the 26S proteosome. As it is degraded, FADD can no longer bind to the Fas receptor to induce apoptosis when the Fas ligand binds to the Fas receptor. The Fas ligand and Fas receptor are on separate cells.
MKRN1によるFADDの調節: MKRN1はFADDをユビキチン化し、26Sプロテアソームの分解標的とする。FADDはFas受容体に結合してアポトーシスを誘導することができなくなる。

細胞内局在

FADDは細胞の核と細胞質の双方に存在する。ヒトのFADDのSer194(マウスではSer191)のリン酸化は、その細胞内局在を調節していると考えられている。FADDの核局在配列核外搬出シグナルはいずれもDEDに位置し、核移行と核外搬出に必要である。FADDはその細胞内局在に依存して、異なる役割を持つ。細胞質では、その主な機能はアポトーシスの誘導である。しかし核内では、反対に生存を促進する効果を持つ[25][29]

c-FLIP

c-FLIP英語版(cellular FLICE inhibitory protein)は、2つのDEDを持つ調節タンパク質である。c-FLIPには、c-FLIPSとc-FLIPLという2つのアイソフォームが存在する。もともと、c-FLIPはFADDのDEDに結合してカスパーゼ-8前駆体の結合とDISCの形成を阻害することで、アポトーシスを負に調節する因子として作用すると考えられていた[30]。しかし、c-FLIPとカスパーゼ-8前駆体が同じDISC内に存在する場合があることが発見された[31]。そのため、c-FLIPが存在することでカスパーゼ前駆体どうしの密接な相互作用が防がれるという機構が提唱されている。カスパーゼは互いに近接して存在しない場合、完全には切断されず、不活性状態のままとなる[30]

PKC

PKCの活性は、Fas受容体を介したアポトーシスに負の影響を与える。これはPKCがFADDの受容体へのリクルートを阻害するためであり、その結果DISCは形成されなくなる。T細胞ではPKCの量の増減によって、Fas受容体が刺激された際のFADDのリクルートが変動することが示されている[32]

MKRN1

MKRN1はE3ユビキチンリガーゼであり、ユビキチンを介した分解の標的とすることでFADDを負に調節する。これによって、MKRN1はアポトーシスのレベルを制御する[33]

炎症性疾患における役割

再発寛解型多発性硬化症の患者の白血球ではFADDレベルの上昇がみられ、これは炎症の増大を反映したものであると考えられている[34]関節リウマチにおいては、マクロファージのFas受容体の刺激によってFADDを含有するDISCの形成が引き起こされていると考えられている。その結果、FADDはMyD88から隔離され、MyD88はIRAKと相互作用して炎症の亢進を引き起こす[35]

がんにおける役割

FADDはアポトーシスに重要な役割を果たすことから、FADDの喪失によってFas受容体が刺激された際もアポトーシスが誘導されなくなり、がん細胞の増殖に有利となる場合がある[25]

しかしながら、卵巣がん[36]や頭頸部扁平上皮癌ではFADDは大きくアップレギュレーションされている。このことががん細胞にどのような利点をもたらしているのかは明らかではないが、FADDが細胞周期の調節と細胞生存に関与していることを考えると、このことと関連したものである可能性が高い[37]非小細胞肺がん英語版においても、FADDのレベルは上昇している。FADDはこれらの疾患の予後マーカーとして利用可能であり、高レベルのFADDは予後の悪さと相関している[38]

治療標的

タキソール微小管の構築に干渉し、細胞周期の停止を引き起こすため、抗がん治療に用いられる薬剤である。Ser194がリン酸化されたFADDは、タキソールによる細胞周期の停止に対する感受性を高める[21]。タキソールはアポトーシスも引き起こし、これにはカスパーゼ-10前駆体が必要であるが、FADDによってリクルートされて活性化される[39]

JNKの活性化はFADDのリン酸化を引き起こすことが示されている。リン酸化されたFADDは、おそらくp53の安定性を高めることで、細胞周期のG2/M期での停止を誘導する。そのため、この経路を活性化する薬剤には治療薬としての可能性がある[40]。しかしながら、FADDの高レベルのリン酸化は、頭頸部がんなど多くのがんにおいて予後の悪さと相関している。これは抗アポトーシス作用を持つNF-κB経路の活性化によるものである可能性が高い。そのため、FADDのリン酸化の阻害も抗がん治療戦略としての可能性がある[41]。例えば、FADDの阻害は薬剤抵抗性卵巣がんの標的治療としての可能性が示唆されている[36]

相互作用

FADDは次に挙げる因子と相互作用することが示されている。

出典

  1. ^ a b c GRCh38: Ensembl release 89: ENSG00000168040 - Ensembl, May 2017
  2. ^ Human PubMed Reference:
  3. ^ Mouse PubMed Reference:
  4. ^ Kim, P.K.M.; Dutra, A.S.; Chandrasekharappa, S.C.; PUCK, J.M (1996). “Genomic structure and mapping of human FADD, an intracellular mediator of lymphocyte apoptosis”. Journal of Immunology 157 (12): 5461–5466. PMID 8955195. 
  5. ^ “NMR structure and mutagenesis of the Fas (APO-1/CD95) death domain”. Nature 384 (6610): 638–641. (1996). Bibcode1996Natur.384..638H. doi:10.1038/384638a0. PMID 8967952. 
  6. ^ a b “NMR structure and mutagenesis of the FADD (Mort1) death-effector domain”. Nature 392 (6679): 941–945. (1998). Bibcode1998Natur.392..941E. doi:10.1038/31972. PMID 9582077. 
  7. ^ a b c Boldin, M. P., Varfolomeev, E. E., Pancer, Z., Mett, I. L., Camonis, J. H. & Wallach, D. (1995). “A Novel Protein That Interacts with the Death Domain of Fas/APO1 Contains a Sequence Motif Related to the Death Domain”. Journal of Biological Chemistry 270 (14): 7795–7798. doi:10.1074/jbc.270.14.7795. PMID 7536190. 
  8. ^ Jeong, E. J.; Bang, S.; Lee, T. H.; Park, Y. I.; Sim, W. S.; Kim, K. S. (1999). “The solution structure of FADD death domain - Structural basis of death domain interactions of Fas and FADD”. Journal of Biological Chemistry 274 (23): 16337–16342. doi:10.1074/jbc.274.23.16337. PMID 10347191. 
  9. ^ Boldin, M. P.; Goncharov, T. M.; Goltsev, Y. V.; wallach, D. (1996). “Involvement of MACH, a novel MORT1/FADD-interacting protease, in Fas/APO-1- and TNF receptor-induced cell death”. Cell 85 (6): 803–815. doi:10.1016/s0092-8674(00)81265-9. PMID 8681376. 
  10. ^ a b c “Death receptor recruitment of endogenous caspase-10 and apoptosis initiation in the absence of caspase-8”. Journal of Biological Chemistry 276 (49): 46639–46646. (2001). doi:10.1074/jbc.M105102200. PMID 11583996. 
  11. ^ “Cytotoxicity-dependent APO-1 (Fas/CD95)-associated proteins form a death-inducing signalling complex (DISC) with the receptor”. EMBO Journal 14 (22): 5579–5588. (1995). doi:10.1002/j.1460-2075.1995.tb00245.x. PMC 394672. PMID 8521815. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC394672/. 
  12. ^ “Ripped to death”. Trends in Cell Biology 21 (11): 630–637. (2011). doi:10.1016/j.tcb.2011.09.002. PMC 3205316. PMID 21978761. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3205316/. 
  13. ^ a b c d Lee, E.-W.; Seo, J.; Jeong, M.; Lee, S.; Song, J (2012). “The roles of FADD in extrinsic apoptosis and necroptosis”. BMB Reports 45 (9): 496–508. doi:10.5483/BMBRep.2012.45.9.186. PMID 23010170. 
  14. ^ a b “TRAIL receptor-2 signals apoptosis through FADD and caspase-8”. Nature Cell Biology 2 (4): 241–243. (2000). doi:10.1038/35008667. PMID 10783243. 
  15. ^ a b Micheau, O.; Tschopp, J. (2003). “Induction of TNF receptor I-mediated apoptosis via two sequential signaling complexes”. Cell 114 (2): 181–190. doi:10.1016/s0092-8674(03)00521-x. PMID 12887920. https://www.hal.inserm.fr/inserm-00527105/file/Figures_Cell_OM.pdf. 
  16. ^ a b “Essential roles of Atg5 and FADD in autophagic cell death - Dissection of autophagic cell death into vacuole formation and cell death”. Journal of Biological Chemistry 280 (21): 20722–20729. (2005). doi:10.1074/jbc.M413934200. PMID 15778222. 
  17. ^ “. FADD and caspase-8 control the outcome of autophagic signaling in proliferating T cells”. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 105 (43): 16677–16682. (2008). Bibcode2008PNAS..10516677B. doi:10.1073/pnas.0808597105. PMC 2575479. PMID 18946037. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2575479/. 
  18. ^ Yeh, W. C.; De La Pompa, J. L.; Mccurach, M. E.; Shu, H. B.; Elia, A. J.; Shahinian, A.; Ng, M.; Wakeham, A. et al. (1998). “FADD: Essential for embryo development and signaling from some, but not all, inducers of apoptosis”. Science 279 (5358): 1954–1958. Bibcode1998Sci...279.1954Y. doi:10.1126/science.279.5358.1954. PMID 9506948. 
  19. ^ “Multiple functions of FADD in apoptosis, NF-kappa B-related signaling, and heart development in Xenopus embryos”. Genes to Cells 17 (11): 875–896. (2012). doi:10.1111/gtc.12004. PMID 23025414. 
  20. ^ “SNP genome scanning localizes oto-dental syndrome to chromosome 11q13 and microdeletions at this locus implicate FGF3 in dental and inner-ear disease and FADD in ocular coloboma”. Human Molecular Genetics 16 (20): 2482–2493. (2007). doi:10.1093/hmg/ddm204. PMID 17656375. 
  21. ^ a b c “Phosphorylation of FADD at serine 194 by CKI alpha regulates its nonapoptotic activities”. Molecular Cell 19 (3): 321–332. (2005). doi:10.1016/j.molcel.2005.06.024. PMID 16061179. 
  22. ^ “Fas-mediated apoptosis and activation-induced T-cell proliferation are defective in mice lacking FADD/Mort1”. Nature 392 (6673): 296–300. (1998). Bibcode1998Natur.392..296Z. doi:10.1038/32681. PMID 9521326. 
  23. ^ “The Fas-associated death domain protein is required in apoptosis and TLR-induced proliferative responses in B cells”. Journal of Immunology 176 (11): 6852–6861. (2006). doi:10.4049/jimmunol.176.11.6852. PMC 3110081. PMID 16709845. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3110081/. 
  24. ^ “Inhibition of death receptor-mediated gene induction by a cycloheximide-sensitive factor occurs at the level of or upstream of Fas-associated death domain protein (FADD)”. Journal of Biological Chemistry 275 (32): 24357–24366. (2000). doi:10.1074/jbc.M000811200. PMID 10823821. 
  25. ^ a b c d “FADD: a regulator of life and death”. Trends in Immunology 31 (7): 260–269. (2010). doi:10.1016/j.it.2010.05.005. PMID 20576468. 
  26. ^ Balachandran, S.; Venkataraman, T.; Fisher, P. B.; Barber, G. N (2007). “Fas-associated death domain-containing protein-mediated antiviral innate immune signaling involves the regulation of Irf7”. Journal of Immunology 178 (4): 2429–2439. doi:10.4049/jimmunol.178.4.2429. PMID 17277150. 
  27. ^ “Regulation of Protein Kinase C Inactivation by Fas-associated Protein with Death Domain”. Journal of Biological Chemistry 287 (31): 26126–26135. (2012). doi:10.1074/jbc.M112.342170. PMC 3406696. PMID 22582393. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3406696/. 
  28. ^ “Domain-containing Protein (FADD) Phosphorylation in Regulating Glucose Homeostasis: from Proteomic Discovery to Physiological Validation”. Molecular & Cellular Proteomics 12 (10): 2689–2700. (2013). doi:10.1074/mcp.M113.029306. PMC 3790283. PMID 23828893. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3790283/. 
  29. ^ “Molecular evidence for the nuclear localization of FADD”. Cell Death and Differentiation 10 (7): 791–797. (2003). doi:10.1038/sj.cdd.4401237. PMID 12815462. 
  30. ^ a b “FLICE-inhibitory proteins: Regulators of death receptor-mediated apoptosis”. Molecular and Cellular Biology 21 (24): 8247–8254. (2001). doi:10.1128/mcb.21.24.8247-8254.2001. PMC 99990. PMID 11713262. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC99990/. 
  31. ^ a b Scaffidi, C.; Schmitz, I.; Krammer, P. H.; Peter, M. E. (1999). “The role of c-FLIP in modulation of CD95-induced apoptosis”. Journal of Biological Chemistry 274 (3): 1541–1548. doi:10.1074/jbc.274.3.1541. PMID 9880531. 
  32. ^ “Protein kinase C regulates FADD recruitment and death-inducing signaling complex formation in Fas/CD95-induced apoptosis”. Journal of Biological Chemistry 276 (48): 44944–44952. (2001). doi:10.1074/jbc.M104919200. PMID 11581255. 
  33. ^ a b “Ubiquitination and degradation of the FADD adaptor protein regulate death receptor-mediated apoptosis and necroptosis”. Nature Communications 3: 978. (2012). Bibcode2012NatCo...3..978L. doi:10.1038/ncomms1981. PMID 22864571. 
  34. ^ “FADD is upregulated in relapsing remitting multiple”. Neuroimmunomodulation 21 (5): 221–225. (2014). doi:10.1159/000356522. PMID 24603611. 
  35. ^ “Fas ligation on macrophages enhances IL-1R1-Toll-like receptor 4 signaling and promotes chronic inflammation”. Nature Immunology 5 (4): 380–387. (2004). doi:10.1038/ni1054. PMID 15004557. 
  36. ^ a b Razaghi, Ali; Villacrés, Carina; Jung, Vincent; Mashkour, Narges; Butler, Michael; Owens, Leigh; Heimann, Kirsten (2017). “Improved therapeutic efficacy of mammalian expressed-recombinant interferon gamma against ovarian cancer cells”. Experimental Cell Research 359 (1): 20–29. doi:10.1016/j.yexcr.2017.08.014. PMID 28803068. 
  37. ^ “FADD expression is associated with regional and distant metastasis in squamous cell carcinoma of the head and neck”. Histopathology 63 (2): 263–270. (2013). doi:10.1111/his.12174. PMID 23763459. 
  38. ^ “FADD protein release mirrors the development and aggressiveness of human non-small cell lung cancer”. British Journal of Cancer 106 (12): 1989–1996. (2012). doi:10.1038/bjc.2012.196. PMC 3388563. PMID 22669160. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3388563/. 
  39. ^ “Taxol induces caspase-10-dependent apoptosis”. Journal of Biological Chemistry 279 (49): 51057–51067. (2004). doi:10.1074/jbc.M406543200. PMID 15452117. 
  40. ^ “FADD phosphorylation is critical for cell cycle regulation in breast cancer cells”. British Journal of Cancer 94 (4): 532–539. (2006). doi:10.1038/sj.bjc.6602955. PMC 2361184. PMID 16450001. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2361184/. 
  41. ^ “A Novel Kinase Inhibitor of FADD Phosphorylation Chemosensitizes through the Inhibition of NF-kappa B”. Molecular Cancer Therapeutics 10 (10): 1807–1817. (2011). doi:10.1158/1535-7163.mct-11-0362. PMC 3191281. PMID 21859840. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3191281/. 
  42. ^ “Molecular and functional interaction of the ATP-binding cassette transporter A1 with Fas-associated death domain protein”. J. Biol. Chem. 277 (44): 41307–10. (Nov 2002). doi:10.1074/jbc.C200436200. PMID 12235128. 
  43. ^ “Identification and characterization of DEDD2, a death effector domain-containing protein”. J. Biol. Chem. 277 (9): 7501–8. (Mar 2002). doi:10.1074/jbc.M110749200. PMID 11741985. 
  44. ^ “Fas-associated death domain protein interacts with methyl-CpG binding domain protein 4: a potential link between genome surveillance and apoptosis”. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100 (9): 5211–6. (Apr 2003). Bibcode2003PNAS..100.5211S. doi:10.1073/pnas.0431215100. PMC 154324. PMID 12702765. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC154324/. 
  45. ^ “The alpha-chain of the nascent polypeptide-associated complex binds to and regulates FADD function”. Biochem. Biophys. Res. Commun. 303 (4): 1034–41. (Apr 2003). doi:10.1016/s0006-291x(03)00487-x. PMID 12684039. 
  46. ^ “PED/PEA-15: an anti-apoptotic molecule that regulates FAS/TNFR1-induced apoptosis”. Oncogene 18 (31): 4409–15. (Aug 1999). doi:10.1038/sj.onc.1202831. PMID 10442631. 

関連文献

関連項目

外部リンク